martes, 26 de junio de 2012

CEB 6/12                                                                       SEP

Espacio Curricular:                                                       Operar instrumentos de Laboratorio Clínico

Docente:                                                                                                  Hernández Hernández Olivia


Bienvenidos a nuestro Blog


Espinosa Gonzáles Alan Misael

López Cruz Diego Antonio


Este blog está destinado para que recopilar todo tipo de información referente a nuestra capacitación:

Laboratorio Clínico
del Centro de Estudios de Bachillerato 6/12
De la Villa de Etla, Oaxaca

-Espectrofotómetro

 PARTES EXTERNAS DE LOS APARATOS Y SU FUNCION

ESPECTROFOTOMETRO
1.- botón  encendido y calibración al aire (0% T). Nos permite primeramente encender y apagar el aparato, posteriormente, calibrar el aparato al valor de 0%de T.
2.-co la celda partimiento de la muestra. Nos permite colocar la celda (recipiente) que contenga la muestra.
3.- foco del piloto, nos indica que el aparato esta encendido y podemos leer las escalas de absorbancia y transmitancia: la primera logarítmica, de 0 a 2.0,en ella podemos leer el valor de absorbancia que registre el aparato y, en la segunda escala decimal de 0 a 100%, el vlor de transmitancia que registre el aparato.
4.- botón selector de la longitud de onda. Nos permite seleccionar la longitud de onda de trabajo en nm y la izquierda la escala de longitud  de onda en nm.
5.- botón de calibración con el blanco o testigo.  Nos permite calibrar el aparato al valor de cero A o 100% de T. utilizando el blanco o testigo.
1.- compartimiento de la muestra (simple comperment).
Nos permite colocar la celda (recipiente) que contenga la muestra.
2.- pantalla digital. Lectro óptico (digital readout). En ella podemos leer el valor de la absorbancia, transmitancia, concentración o el factor que registre el aparato.
3.- Tecla MODE o selectora de funciones (Duv mode selector). T (ttransmitancia9, A (absorbancia), C (concentración) y F factor). Nos permite seleccionar la función deseada T, A, C, o F.
4.- Tecla DEC (concentración adjustment controls). De ajuste de concentración para incrementar los valores. Cuando de seleccione la función de concentración para ajustar el valor de concentración de la solución estándar (St). Con esta tecla se puede ir aumentando el valor que se observa en la escala digital.
5.- tecla INC (concentración adjustment controls).  De ajuste de concentración para disminuir los valores. Cuando se seleccione la función de concentraciónpara ajustar el valor de la solución estándar (St), con esta tecla se puede ir disminuyendo el valor que se observa en la escala digital.
6.  Tecla para imprimir (Print Button). Cuando el apara­to está conectado a una computadora o con un regis­trador de datos, con esta tecla se puede mandar a imprimir los valores obtenidos de las lecturas.
7.  interruptor (Lctmp Power Switch). Se utiliza para encender las lámparas de Tungsteno (VIS) y deuterio (UV). Sirve para encender la fuente luminosa que se requiere trabajar.
8.  Botón de encendido de la lámpara de deuterio (Deu-terium LampStarter Button). Cuando se requiere utilizar la fuente luminosa de deuterio, después de colocar el interruptor en la posición correspondien­te, es necesario oprimir este botón durante unos tres segundos para que la fuente se encienda, si no se oprime este botón aunque el interruptor indique deuterio, la fuente luminosa no se encenderá.
9.  Botón de espejos (Mirror Lever) (VIS-UV). Nos per­mite seleccionar la posición de VIS cuándo se re­quiere utilizar el aparato en la región visible, y UV, para la región ultravioleta, orientando una serie de espejos que se encuentran en la parte interna del aparato y así reflejar de la fuente luminosa adecuada la energía necesaria y, después de atravesar la muestra problema, reflejar la radiación transmitida hacia el íotodetector correspondiente de acuerdo a la radia­ción utilizada.
10.   Botón de encendido y apagado del aparato (Power Switch) (ON-OFF). Nos permite encender o apagar el aparato.
11,   Botón selector de longitud de onda (Wavelength Selection). Nos permite seleccionar la longitud de onda de trabajo en nm y al lado izquierdo inmediatamente la escala de longitud de onda, en ella se lee la longitud de onda en nm, que se va seleccionando mientras se gira el botón selector de longitud de onda.



Botón selector de sensibilidad (Lo-M-Hi) (Sensitivity Switch). Según las necesidades de trabajo nos per­mite seleccionar una sensibilidad baja. (Lo), media (M) o alta (Hi).
13.  Botón de ajuste a O de A y 100% de T (100% T Zero A Control), Nos permite calibrar el aparato al valor de O de A o 100% de T, utilizando el blanco o testigo.

Los espectrofotómetros que trabajan con radiación visi­ble tienen una trayectoria interna que se muestra en forma sintetizada como se observa en la ilustración.

Los espectrofotómetros que trabajan con la radiación. Visible y ultravioleta presentan doble fuente ole radia­ción (lámparas) y dos foto detectores (fototubos), y están equipados con espejos móviles para poder reflejar la ra­diación en la dirección, necesaria. En la figura i'08 se muestra cómo es la trayectoria interna en un espectrofo-tótnetro de radiación visible ultravioleta.

3.  Saque la celda con el blanco o testigo con que se calibró al valor de cero de A del compartimiento de la muestra y del portaceldas,
4.  Intercambie en el portaceldas y en el compartimien­to de la muestra las diferentes soluciones estándar y problemas, para ir registrando las lecturas de cada una de estas soluciones.
5.  Elabore una tabla de valores que contenga la con­centración y lectura de cada una de las soluciones de la serie, la longitud de onda seleccionada y el nombre del compuesto, radical, o ion a determinar.
6.  Dibuje en una hoja de papel milimétrico la curva de calibración.
7.  Determine la lectura de la solución problema, si este valor no está comprendido entre los límites de la curva de calibración, se hará una dilución.
8.  Interpole la lectura de la solución problema en la curva de calibración y determine la concentración de esta solución problema.
9.  O bien, podrá utilizar el método directo o el método del factor que más adelante se describirán.

Obtención de lecturas en el SP 21D utilizando la Junción T
1.  Calibre el SP 21 D siguiendo los pasos indicados en la técnica de calibración.
2.  Presione la tecla MODE para colocar el cursor colocar la posición de transmitancia T.
3.  Saque la celda con el blanco o testigo con que se calibró al valor de cien de T del compartimiento de la muestra y del portaceldas.
4.  Intercambie en el portaceldas y en el compartimien­to de la muestra las diferentes soluciones estándar y problemas para ir registrando las lecturas de cada una de estas soluciones.
5.  Elabore una tabla de valores que contenga la concen­tración y lectura de cada una de las soluciones de la serie, la longitud de onda seleccionada y el nombre del compuesto, radical, o ion a determinar.
6.  Dibuje en una hoja de papel semilogarítmico la cur­va de calibración.
7.  Determine la lectura de la solución problema, si este valor no está comprendido entre los límites de la cur­va de calibración, se hará una dilución.
8.  Interpole la lectura de la solución problema en la curva de calibración y determine la concentración de esta solución problema.

Obtención de resultados de concentración en el SP 2 ID utilizando la Junción C
1.  Calibre el SP 21D, siguiendo los pasos indicados en la técnica de calibración utilizando A o T.
2.  Presione la tecla MODE para colocar el cursor en la posición de concentración C.
3.  Saque la celda con el blanco o testigo del comparti­miento de la muestra y del porta celdas con que se calibró al valor de cero de A o 100% de T e introduz­ca en el portaceldas y en el compartimiento de la muestra por la solución estándar.
4.  Presione las teclas DEC o INC hasta que en la escala digital aparezca el valor representativo de la concen­tración de la solución estándar.
5.  Intercambie en el porta celdas y en el compartimien­to de la muestra las diferentes soluciones problema para ir registrando las lecturas de concentración en forma directa de la escala digital con sus unidades correspondientes (las unidades serán las mismas que se están manejando para el estándar).


Aplicaciones de la SP VIS-UV
La espectrofotometría VIS-UV tiene una gran aplicación en las determinaciones cuantitativas en muchas áreas, las cuales, en su mayoría, en la actualidad están autorizadas por NOM (Norma Oficial Mexicana) y se publican
Ejemplos de las aplicaciones y determinaciones espectrofotométricas
•    Determinaciones en los análisis clínicos en sangre
(mg/dl):
  Glucosa
-  Urea
-  Creatinina
-  Ácido úrico
-  Colesterol
-  Proteínas
-  Bilirrubinas
-  Hemoglobina
-  Fosfatasa alcalina y acida
-  Fósforo
-  Calcio
-  Albúmina
*    En análisis de aguas potables y residuales:

tabla 15
Normas para el análisis de aguas potables y residuales


NOM
                                                      Aplicación

NMX-AA39
Determinación de sustancias activas al azul de metileno en aguas                                                                          residuales (detergentes).
NMX-AA-44-1977          
Determinación de cromo hexavalente en agua.
NMX-AA-50
Determinación de fenoles en agua.
NMX-AA-51
Determinación de metales en el análisis de aguas.
MMX-AA-58
Determinación de cianuros en el análisis de aguas.
NMX-AA-77
Determinación de fluoruros en el análisis de aguas.
NMX-AA-78
Determinación de zinc en el análisis de aguas.
NOM-AA-84-1982

Determinación de sulfates en agua residuo y potable.
Determinación de fosfatos en agua residuo
Se puede determinar la estructura de una sustancia por medio del espectro de adsorción en UV e infrarrojo.


•    En el área microbiológica y bioquímica:
En el control de cinética enzimática (por ejemplo: como las siguientes enzimas: sacarosa, invertasa, fructofurnosidasa, etc.), determina los cambios por efecto de concentración de enzima, efecto por la concentración  de sustrato, efecto causado por cambios de temperatura, efecto causado por los cambios de pH.
aj    Determinación de fósforo en DNA.
b)    Determinación del contenido de RNA (en el área de fermentaciones).
c)     Determinación de digestibilidad in uitro (en el área de fermentaciones).
d)    Determinación de concentración de alcoholes superiores (en el área de fermentaciones).
•    En el área de análisis de alimentos:
a)   Determinación de nitrógeno proteico.

-Venopunción

VENOPUNCION

OBJETIVO:
Que el alumno aprenda los conocimientos y aptitudes que se desarrollan dentro del laboratorio y que sea completamente en la realización de una venopuncion.
¿QUE APTITUDES SE DEVÉN TOMAR?
Respeto al paciente, organización, responsabilidad, limpieza, orden, ética.

MATERIALES QUE NECESITAS:
*Jeringa
*Torundas
*Alcohol al 70%
*Tubo de ensallo con anticuagulante.
*Torniquete
*Gradilla

FUNDAMENTO:
Se practica cuando el medico solicitante ordena un analisis.Nosotros investigamos lo solicitado entregando un informe de resultados.

TÉCNICA:
1.Localiza la vena.
2.Hacer la asepsia.
3.Aplicamos el torniquete o ligadura.
4.Se hace la venopuncion.
5.Se pone una torunda el el brazo, retirar torniquete, retirar aguja y doblar  brazo.

PRECAUCIONES:
*Evita que el paciente vea la extracción.
*Inspirar confianza durante la extracción.
*Mantener la higiene
*Extraer en venas visibles
*El bisel debe estar hacia arriba

IMPLICACIONES QUE PUEDEN PRESENTARSE:
*Incope
*histeria
*paciente hemofilico.

RIESGO:
* Contaminar nos
*Que el paciente se desmaye.
*Que al paciente se le forme un hematoma
*Picar demasiadas veces .
*Que el paciente sufra de Trombosis.

 Conclusión:

Se llama punción a la acción de introducir una aguja o catéter en un órgano o cavidad, generalmente llena de líquido, para la extracción de éste o la obtención de muestras.
La venopunción es la instalación de una aguja o un catéter a la luz de
una vena a través de la piel. Permite el establecimiento de un acceso a la circulación mediante agujas y catéteres, y es un paso esencial para la vigilancia y el tratamiento de los pacientes.
Inyectar se define como la introducción de líquidos al interior de los tejidos
mediante una aguja conectada a una jeringa; una inyección intravenosa, por lo
tanto, es la acción de introducir alguna sustancia medicamentosa a la luz de una
vena.

-Objetivos del Aceite de Inmersión


TECNOLOGÍA:

La A. N. es posiblemente el criterio más importante cuando se selecciona un objetivo. Conforme se incremente la A. N. a través de las series de objetivos del mismo aumento, la capacidad de colección de la luz y la resolución se incrementan. A diferencia del aire, el aceite de inmersión tiene un índice de refracción similar al del vidrio del cubre objetos. Al colocar aceite de inmersión entre el lente frontal del objetivo (diseñado para usarse con aceite de inmersión) y el cubre objetos, el rango angular de los rayos difractados capturados por los lentes se incrementan y, en efecto, incrementa la A. N. del objetivo. Los rayos de luz que pasan a través del espécimen, cubre objetos y el aceite no se refractan conforme entran al lente pero solamente conforme estos dejan la parte de arriba de la superficie. Los objetivos que usan agua y/o glicerina como medio de imagen también están disponibles.
Los diferentes fabricantes de microscopios producen objetivos con tolerancias cerradas para los índices de refracción y dispersión y requieren valores que empaten en el aceite (u otros medios) colocados entre el cubre objetos y los lentes frontales del objetivo. Los usuarios deben, por lo tanto, usar solamente el aceite (u otros medios) recomendados por el fabricante.

APLICACIONES:
La mayor resolución ganada a través del uso de aceite de inmersión habilita a los usuarios a enfocar objetos muy pequeños que no se resolvería usando objetivos secos. Los objetivos de aceite inmersión son usados para la observación objetivos muy pequeños, como las bacterias individuales y aplicaciones de alta resolución, como el TIRF y las aplicaciones de fluorescencia confocal.

CONFIGURACIÓN DEL MICROSCOPIO:
Los objetivos Nikon CFI Plan Apocromáticos TIRF de inmersión en aceite brindan la mayor A. N. de todos los objetivos Nikon y han sido diseñados específicamente para aplicaciones TIRF (CFI Plan Apocromático TIRF 60x A. N. 1.45 aceite, y CFI Plan Apocromático TIRF 100x A. N. 1.45 aceite). El objetivo CFI Plan Apocromático TIRF 60x A. N. 1.45 aceite, incorpora un anillo para corrección de cambios de temperatura. El Nikon CFI Plan Apocromático VC 60x A. N. 1.40 aceite y el 100x aceite, son la elección ideal para aplicaciones confocales con varias tinciones fluorescentes.
Nikon fabrica dos tipos de aceite de inmersión: Tipo A es un aceite de propósito general usado para campo claro, campo oscuro, contraste de fases y fluorescencia mientras que el tipo NF ayuda a mejorar los cocientes señal entre ruido en microscopia de fluorescencia, particularmente en aplicaciones de pocia luz o aquellas entre los 340-380nm, asociados típicamente con calcio o imagen profunda UV.



El aceite tiene un índice de refracción similar al del vidrio (1,5 aprox.) y se utiliza para el objetivo de 100X. Se usa generalmente aceite de cedro. No podés usar el objetivo de 100X en seco, a diferencia del de 40X, 10X y menores.




Conclusión:


Se llega a la determinación que el aceite de inmersión es necesario para poder hacer un conteo de células que previamente ya se realizo mediante un frotis y posteriormente el hemograma para realizar lo que es una lectura y conteo de células sanguineas.

-Tinción de Wright

Neutrífilo


La tinción de Wright es un tipo de tinción usada en histología para facilitar la diferenciación de los tipos de células de la sangre. Se usa principalmente para teñir frotis de sangre y punciones medulares, para ser examinadas al microscopio. En citogenética se usa para teñir cromosomas, para facilitar el diagnóstico de síndromes y enfermedades.
Lleva el nombre de James Homer Wright, su descubridor, que la obtuvo modificando la tinción de Romanowsky, en 1902.
Debido a que ayuda a distinguir fácilmente las células de la sangre se convirtió en una técnica muy usada para el conteo de losglóbulos blancos, una técnica rutinaria usada cuando hay sospecha de infecciones.
Fundamento
La tinción de Wright es una tinción de tipo Romanowsky.
Una tinción de Romanowsky consiste en azul de metileno y sus productos de oxidación, así como eosina Y o eosina B.
La acción combinada de estos colorantes produce el efecto Romanowsky que da una coloración púrpura a los núcleos de losleucocitos y a los gránulos neutrofílicos y da color rosado a los eritrocitos. Los componentes de este efecto son el azul B y la eosina Y.
Las propiedades de tinción de Romanowsky dependen del enlace de los colorantes a las estructuras químicas y de las interacciones del azul B y la eosina Y. Los agrupamientos de ácidos nucleicos, las proteínas de los núcleos celulares y el citoplasma inmaduro reactivo, fijan el azul B, colorante básico.
La eosina Y, colorante ácido, se fija a los agrupamientos básicos de las moléculas de hemoglobina y a las proteínas básicas.
Glóbulos blancos teñidos con colorante de Wright:



Linfosito





Basófilo


Conclusión:

Gracias a la tinción de Wright, se puede realizar un conteo de células, este es un líquido de coloración azul,que se coloca sobre un frotis previamente realizado después de una toma de muestra, gracias a la tinción que es parte esencial para realizar un hemograma y posterior a realizar el conteo y diferenciación de células sanguineas y mantener un nivel normal de las mismas.

-Hemograma - Frotis



Es un análisis de sangre realizado en el 
laboratorio en el que se van a cuantificar y evaluar diferentes grupos celulares:

glóbulos rojos (eritrocitos),
glóbulos blancos (leucocitos),
los trombocitos o plaquetas,
el contenido de hemoglobina y
sus correspondientes índices






Se coloca una gota de sangre cerca de uno de los extremos del portaobjetos. Se pone en contacto con la gota uno de los bordes menores de otro portaobjetos y se deja que la sangre se extienda por capilaridad a lo largo de la arista (ver fig.). Entonces se desliza suavemente el portaobjetos hacia el otro extremo, de manera que la sangre se extienda uniformemente. Es conveniente hacer varias extensiones y escoger la mejor. Una vez hecha la extensión, se deja secar (unos 10 min.)


Fijación de los frotis:

Cuando se emplean colorantes hematológicos habituales, la fijación se produce durante la aplicación del colorante concentrado, ya que estos colorantes llevan alcohol metílico absoluto como disolvente. Cuando se prefiere trabajar con un colorante acuoso diluido, los frotis secados al aire deben ser fijados con alcohol metílico absoluto.

Hematíes:

Los hematíes, glóbulos rojos o eritrocitos carecen de núcleo. Tienen forma esférica, con un diámetro globular de 7-8 micras; vistos de perfil, tienen forma de lente bicóncava. El número de hematíes por mm de sangre es de 4,5-5 millones en el hombre y de 4-4,5 millones en la mujer. Contienen un pigmento rojo llamado hemoglobina. La función que realizan estas células es el transporte de gases por el sistema circulatorio. La vida media de los hematíes es de aproximadamente 120 días.



Conclusión:
Ha sido una de las prácticas más interesantes que hemos tenido hasta el momento, referente a laboratorio clínico; aquí pudimos identificar los diferente tipos de células que se encuentran en la sangre, tales como:
*Basófilos
*Neutrófilos
*Linfocitos
*Trombocitos
*Leucocitos
*Eritrocitos
Hablando claramente de un nivel normal.